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Genetic Solutions > PGS + ERA Synchrony

Test PGT-A + ERA Synchrony

Le meilleur embryon au bon moment

  • Aperçu technique
  • Documentation et ressources
  • Preuves scientifiques
  • Je ne suis pas un professionnel ou une professionnelle de la santé

160 000 embryons analysés/année

 

Plus de 22 000 tests ERA réalisés

Précis à 99 %

Augmentation du taux de grossesse par transfert

Are you interested?

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Aperçu technique
  • Test Synchrony
  • Avantages
  • Indications

Pourquoi utiliser le test DPI-A + ERA Synchrony?

  • Chez IGENOMIX, nous travaillons avec l’objectif d’aider les familles à obtenir une grossesse qui leur permettra d’avoir un bébé en bonne santé à la maison.
  • Deux facteurs principaux doivent être pris en compte si l’on veut maximiser les chances d’implantation pendant un traitement de FIV : avoir un embryon normal du point de vue chromosomique ainsi qu’un endomètre réceptif.

Qu’est-ce que le test PGT-A + ERA Synchrony?

Le facteur de l’embryon: test PGT-A (PGS)

  • Le test PGT-A analyse les embryons générés pendant un cycle de FIV.
  • Il détermine quels embryons possèdent un nombre normal de chromosomes.
  • Les embryons qui possèdent le bon nombre de chromosomes ont plus de chances de s’implanter.
Plus d’informations
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Endometrial factor: ERA

  • Le test ERA analyse l’endomètre de la femme, là où l’embryon doit s’implanter.
  • L’endomètre ne permet l’implantation de l’embryon que s’il est dans une phase réceptive.
  • Le test ERA détermine si l’endomètre est réceptif ou non lors du prélèvement de l’échantillon, ce qui aide le clinicien à programmer le transfert au bon moment.
Plus d’informations
  • Réduction des taux de fausse couche.
  • Augmentation des taux de grossesse par transfert.
  • Diminution du nombre de cycles de traitement de FIV nécessaires (économie de temps et d’argent).
  • Augmentation des chances d’avoir un bébé en bonne santé.
  • Diminution du nombre de transferts infructueux (échec de l’implantation).
  • Si l’embryon et l’endomètre sont synchronisés, le clinicien en FIV peut transférer le bon embryon au bon moment.
  • Le test PGT-A + ERA Synchrony permet de prendre en compte les deux facteurs clés pour l’atteinte de votre objectif : avoir un bébé en bonne santé à la maison.

Qui devrait passer le test PGT-A + ERA Synchrony?

  • Âge maternel avancé: 35 ans ou plus
  • Fausses couches récurrentes: 2 fausses couches ou plus de cause inconnue
  • Cycles de procréation assistée sans obtenir une grossesse: 2 ou davantage de cycles de procréation assistée sans avoir obtenu une grossesse
  • Infertilité masculine: hommes ayant une faible concentration de spermatozoïdes, inférieure à 5 millions par ml
  • Grossesses antérieures présentant des anomalies: une grossesse précédente présentant une anomalie chromosomique, en particulier dans un cycle de procréation assistée
Documentation et ressources
  • Documents sur le test PGT-A (PGS) destinés aux spécialistes
  • Documents sur le test ERA destinés aux spécialistes

Fiches cliniques

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Preuves scientifiques

Études pertinentes sur le test PGT-A (PGS):

  • Études réalisées par Igenomix
  • Études réalisées à l’externe

Rubio et al: In vitro fertilization with preimplantation genetic diagnosis for aneuploidies in advanced maternal age: a randomized, controlled study. Fertil Steril. 2017 May;107(5):1122-1129. 

Yang Z, Liu J, Collins GS, Salem SA, Liu X, Lyle SS, et al. Selection of single blastocysts for fresh transfer via standard morphology assessment alone and with array CGH for good prognosis IVF patients: results from a randomized pilot study. Mol Cytogenet 2012 May 2; 5(1):24.  

Coates A, Kung A, Mounts E, Hesla J, Bankowski B, Barbieri E, Ata B, Cohen J, Munné S. Optimal euploid embryo transfer strategy, fresh versus frozen, after Preimplantation Genetic Testing for Aneuploidies with next generation sequencing: a randomized controlled trial.  Fertil Steril. 2017 Mar;107(3):723-730.e3.   

Coates A, Bankowski BJ, Kung A, Griffin DK, Munne S. Differences in pregnancy outcomes in donor egg frozen embryo transfer (FET) cycles following Preimplantation Genetic Testing for Aneuploidies (PGT-A): a single center retrospective study. J Assist Reprod Genet. 2017 Jan;34(1):71-78.    

Sanchez-Ribas et al., Transcriptomic behavior of genes associated with chromo some 21 aneuploidies in early embryo development. Fertility and Sterility, 2019; 111, 5:991-1001. 

Goldwaser, Tamar et al. Cell-free DNA for the detection of fetal aneuploidy. Fertility and Sterility, 2018; 109, 2, 195 – 200. 

Kuznyetsov V, Madjunkova S, Antes R, Abramov R, Motamedi G, Ibarrientos Z, et al.  Evaluation of a novel non-invasive preimplantation genetic screening approach. PLoS ONE; 2018; 13(5): e0197262. 

Munné S, Status of preimplantation genetic testing and embryo selection. RBMO. 2018; 37(4):393-396. 

Levy et al., Prenatal diagnosis by chromosomal microarray analysis. Fertility and Sterility, 2017; 109, 2, 201–212.  

Ottolini C. et al., Scientific Reports. Tripolar mitosis and partitioning of the genome arrests human preimplantation development in vitro, 2017;7:9744. 

Ottolini C. et al., Scientific Reports. Tripolar mitosis and partitioning of the genome arrests human preimplantation development in vitro, 2017;7:9744. 

Munné, Santiago et al. Mosaicism: “survival of the fittest” versus “no embryo left behind”. Fertility and Sterility, 2016; 105, 5, 1146 – 1149. 

Bolton et al., Mouse model of chromosome mosaicism reveals lineage-specific depletion of aneuploid cells and normal developmental potential. Nature Communications, 2016; 29;7:11165. 

Cimadomo D. et al, The Impact of Biopsy on Human Embryo Developmental Potential during Preimplantation Genetic Diagnosis. Hindawi, 2016, 7193075. 

Scott RT, Galliano D., The challenge of embryonic mosaicism in preimplantation genetic screening. Fertility and Sterility, 2016; 105, 5. 

McCoy RC, Demko ZP, Ryan A, Banjevic M, Hill M, Sigurjonsson S, et al.  Evidence of Selection against Complex Mitotic-Origin Aneuploidy during Preimplantation Development. PLoS Genet, 2015; 11 (10): e1005601.  

Kung A. et al., Validation of next-generation sequencing for comprehensive chromosome screening of embryos. Reproductive BioMedicine, 2015; 1472-6483. 

Greco E, Minasi MG, Fiorentino F. Healthy Babies after Intrauterine Transfer of Mosaic Aneuploid Blastocysts, N Engl J Med, 2015; Nov 19;373(21):2089-90.  

Yang Z et al., Selection of single blastocysts for fresh transfer via standard morphology assessment alone and with array CGH for good prognosis IVF patients: results from a randomized pilot study., 2012, 5:24. 

Études pertinentes sur le test ERA:

  • Études réalisées par Igenomix
  • Études réalisées à l’externe

The development of the ERA diagnostic tool was published in the paper by Díaz-Gimeno et al, 2011 (Fertil Steril. 2013 Feb; 99(2):508-17).

ERA´s effectiveness and consistency were demonstrated in the paper by Díaz-Gimeno et al, 2013 (Fertil Steril. 2013 Feb; 99 (2): 508-17). 

ERA clinical applicability to patients with implantations failure was demonstrated in a publication by Ruiz-Alonso et al, 2013 and 2014. 

What a difference two days make: “personalized” embryo transfer (pET) paradigm: a case report and pilot study Ruiz-Alonso M. et al, 2014. (Hum Reprod. 2014 Jun;29(6):1244-7)

A randomized study is currently in progress to assess its applicability to patients without any prior assisted reproduction treatment (ClinicalTrials.gov Identifier: NCT01954758). 

The role of the endometrial receptivity array (ERA) in patients who have failed euploid embryo transfers. Tan J, Kan A, Hitkari J, Taylor B, Tallon N, Warraich G, Yuzpe A, Nakhuda G. J Assist Reprod Genet. 2018 Jan 11. doi: 10.1007/s10815-017-1112-2. [Epub ahead of print] 

Combinatorial use of Endometrial Receptivity Array (ERA) and PGT-A can improve the clinical outcome in cases with previous ART failures. N. Findikli, M. Gultomruk, K. Boynukalin, M. Kavrut, E. Oral, M. Bahceci. ESHRE Oral communication. 

Pregnancy outcomes in patients undergoing embryo transfer in cycle following endometrial receptivity assay. M. Pasternak, G. Schattman, Z. Rosenwaks. ASRM Poster.  

The implantation rate of Japanese infertile patients with repeated implantation failure can be improved by endometrial receptivity array (ERA) test: A randomized controlled trial.  S. Taguchi, M. Funabiki, T. Hayashi, Y. Tada, Y. Iwaki, M. Karita, T. Ota, K. Maeda, T. Matsubara, P. Zada, N. Sugiyama, Y. Nakamura. ASRM Oral communication. 

Efficacy of the endometrial receptivity array for repeated implantation failure in Japan: A retrospective, two-centers study. Hashimoto T, Koizumi M, Doshida M, Toya M, Sagara E, Oka N, Nakajo Y, Aono N, Igarashi H, Kyono K. Reprod Med Biol. 2017 Jun 27;16(3):290-296. doi: 10.1002/rmb2.12041. eCollection 2017 Jul. PMID:29259480 

Assessment of endometrial receptivity by endometrial receptivity array (ERA) in patients with adenomyosis and previous implantation failure in IVF.  Kaur S, Mahajan N, Rani K, Naidu P, Kaur J. ESHRE Poster. 

Mode of progesterone administration and its effects on endometrial receptivity in programmed frozen embryo transfer cycles.  Rosen A, Huang A, Billb Y. PCRS Poster.  

Endometrial Receptivity and pregnancy rates are higher after 7 days of progesterone in medicated FET cycles.  A.M. Propst, L. Hansard, K. Silverberg, M. Hegtvedt, N.Z. Burger, T.C. Vaughn. ASRM Poster. 

Endometrial receptivity array: Clinical application. Mahajan N. J Hum Reprod Sci. 2015 Jul-Sep;8(3):121-9. doi: 10.4103/0974-1208.165153. Review. PMID:26538853. 

Live birth after embryo transfer in an unresponsive thin endometrium.  F. Cruz, J. Bellver. Gynecol Endocrinol. 2014 Jul;30(7):481-4. doi: 10.3109/09513590.2014.900747. Epub 2014 Mar 20. 

Mode of progesterone administration and its effects on endometrial receptivity in programmed frozen embryo transfer cycles.  Rosen A, Huang A, Billb Y. PCRS Poster. 

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